给你三条建议：1. 尝试用搅棒摩擦容器壁形成晶核。2. 如果还是没有，能不能查到目标物的溶解度，多糖的量是否足够多。3. 目标物是不是在纯化过程中被吸附、滤除、分解（pH=?）。

纤维素凝聚能够重复利用，而且脱色效果是很明显的~何况凝聚能够再生，有条件的话直接上凝聚。多糖一般脱色必然伴随糖的损失，特别是采用大孔树脂，这个你实验室要是有人做植化，你可以看看大孔树脂一般用在什么时候。植物多糖里面蛋白含量一般是比较少的，同时采用氯仿正丁醇方法脱蛋白，多糖损失可达40%左右，但是一般脱4次依然还有中间层，要是精密测含蛋白量，就用生化的凯氏定氮法，但是我觉得不用这么复杂，因为在后续纯化过程中蛋白是越来越少的。之前脱色素，有人采用石油醚脱色素，要是你的药物中糖分少的话就用它吧~效果还是比较好的。脱完色素的药渣算产率要按照原始重量算。一处理就没有了，就换换，一般多糖是水溶的，至少溶于热水。醇沉的时候把握好水提夜的浓度，太稀的话浪费酒精，而且沉淀也很慢~注意好比例再试试~醇沉3次后多糖颜色会较淡~真空干燥和冻干的颜色差别较大。查查看你的药物里面含糖量有人做过没~有，是多少；没有，看看它的功效或者再找文献。测不出糖浓度，看看是不是其他干扰，比如试剂问题，苯酚有没有问题，仪器问题~有时候出问题不一定是实验本身的问题，再就是实验要淡定，不要急躁。

用5000分子量的超滤膜包去除小分子和部分色素，以我的经验，超滤膜包的损失还是很大的，如果你的样品本来就不多。你可以试试透析袋，虽然慢一点，但是不会有死体积的损失。另外你最开始水提醇沉得到的多糖是否测过多糖含量？不会是蛋白、色素啊之类的占有太大比例吧？鉴于你的步骤太多，都做完了很难找到出问题的步骤，建议你每一步做完都测一下多糖含量，这样很快就能找到出问题的步骤。